Informujemy, iż nasz sklep używa plików cookie. Korzystając z niego, akceptują Państwo regulamin.

Oroxylum indicum ekstrakt 98% Oroxylin A 0,5g

299,00 zł
Netto

Ocena :  

0 opinii

Oroxylum indicum ekstrakt 98% Oroxylin A 0,5g

OROXYLUM INDICUM - CO TO JEST?

Oroxylum indicum (O. indicum) to drzewo powszechnie nazywane indyjskim drzewem trąbkowym występującym w krajach tropikalnych, takich jak Indie, Japonia, Chiny, Sri Lanka, Malezja. Składniki chemiczne pozyskiwane z różnych części rośliny obejmują bajkaleinę-7-O-diglukozyd (Oroxylin B), bajkaleinę-7-O-glukozyd, chryzynę, apegeninę, prunetynę, sitosterol, oroksydynę, biochaninę-A, kwas elagowy, bajkaleinę i jej 6- i 7-glukuronidy, scutellarein, tetuin, antrachinon i aloe-emodyna. Różne części rośliny wykorzystywane są w ajurwedzie i medycynie ludowej do leczenia różnych dolegliwości, takich jak rak, biegunka, gorączka, wrzody i żółtaczka. Ostatnie badania in vivo i in vitro wykazały jego właściwości przeciwzapalne, przeciwwrzodowe, hepatoprotekcyjne, przeciwnowotworowe, przeciwutleniające, fotocytotoksyczne, antyproliferacyjne, przeciwartretyczne, przeciwdrobnoustrojowe, antymutagenne i immunostymulujące.

OPIS BOTANICZNY

O. indicum to małe lub średnie drzewo liściaste do 12 m wysokości, o miękkiej jasnobrązowej lub szarawobrązowej korze z korkowatymi przetchlinkami. Liście są bardzo duże, 90-180 cm długości 2-3 pierzaste z 5 lub więcej parami małżowin pierwotnych, osadki bardzo szybkie, cylindryczne, nabrzmiałe na styku gałęzi, listki 2-4 pary jajowate lub eliptyczne, spiczaste, nagie. Łodygi dużych liści więdną, spadają z drzewa i zbierają się u podstawy pnia, wyglądając jak stos połamanych kości kończyn. Kwiaty są czerwonopurpurowe na zewnątrz i blade, różowożółte wewnątrz, liczne, w dużych wyprostowanych gronach. Kwiaty kwitną nocą i wydzielają silny, śmierdzący zapach, który przyciąga nietoperze. Drzewo ma długie strąki owoców, które zakrzywiają się w dół, zwisają z gałęzi, wyglądając jak skrzydła dużego ptaka lub zwisające w nocy sierpy lub miecz. Owoce są płaskimi torebkami o długości 0,33-1 mi szerokości 5-10 cm i mieczowatym kształcie. Gdy strąk pęka, nasiona sfruwają na ziemię, często pokonując pewną odległość, wyglądając jak motyle. Nasiona są liczne, płaskie i uskrzydlone dookoła jak papierowe skrzydła, z wyjątkiem podstawy. Roślina kwitnie w czerwcu-lipcu i owocuje w listopadzie. Świeża kora korzenia jest miękka i soczysta; jest słodka, później staje się gorzka. Po wyschnięciu kora kurczy się, przylega ściśle do drewna i staje się lekko spękana.

TRADYCYJNE ZASTOSOWANIE

Korzenie są słodkie, cierpkie, gorzkie, cierpkie, chłodzące, przeciwzapalne, anodowe, afrodyzjakalne, wykrztuśne, przystawkowe, wiatropędne, trawienne, przeciwrobacze, zaparcia, napotne, moczopędne, przeciwartretyczne, przeciwcukrzycowe i przeciwgorączkowe. Tonik jest przydatny w obrzękach, kaszlu, skręceniu nerwobólach, czkawce, astmie, zapaleniu oskrzeli, jadłowstręcie, niestrawności, wzdęciach, kolkach, biegunce, czerwonce, duszności, dnie moczanowej, wymiotach, leukodermie, ranach, reumatoidalnym zapaleniu stawów i gorączce. Kora korzenia stosowana jest w zapaleniu jamy ustnej, raku nosogardzieli i gruźlicy. Liście są używane jako żołądek, wiatropęd i wzdęcia. Odwar z liści podawany jest w leczeniu bólu reumatycznego, powiększonej śledziony, wrzodów, kaszlu i zapalenia oskrzeli. Dojrzałe owoce są gryzące, słodkie, przeciwrobacze i żołądkowe. Są przydatne w pharyngodynii, chorobach serca, gastropatii, zapaleniu oskrzeli, hemoroidach, kaszlu, palach, żółtaczce, niestrawności, ospie, białaczce i cholerze. Nasiona są używane jako środek przeczyszczający. Suszony proszek z nasion jest używany przez kobiety do wywołania poczęcia. Z nasion uzyskuje się nieschnący olej stosowany w przemyśle perfumeryjnym. Nasiona są mielone z sadzą ogniową, a pasta jest nakładana na szyję, aby szybko złagodzić ból migdałków. Nasiona używane są w tradycyjnej indyjskiej medycynie ajurwedyjskiej, zawarte w słynnych preparatach tonizujących, takich jak Chyawanprash. Odwary z kory stosuje się do leczenia wrzodów żołądka, a pastę z proszku z kory stosuje się na raka jamy ustnej, świerzb i inne choroby skóry. Olejek leczniczy z O. indicum w bazie oleju sezamowego wkroplony do uszu łagodzi ból w zapaleniu ucha.

KOMPOZYCJA

Wiadomo, że liście O. indicum zawierają flawony i ich glikozydy, bajkaleinę (5,67-trihydroksyflawon) i jej 6 i 7-glukuronidy, chryzynę (5,7-dihydroksyflawon), scutellareinę i jej 7- glukuronidy, antrachinon i aloeemodynę, chryzyno-7-O-glukuronid, chryzyno-diglikozyd oraz irydoidy. Ekstrakt octanu etylu z liści O. indicum oddzielono za pomocą wysokoobrotowej chromatografii przeciwprądowej, aby uzyskać chryzynę (160,9 mg, czystość 97,3%), bajkaleinę (130,4 mg, czystość 97,6%), 7-O-glukozyd bajkaleiny (314,0 mg, 98,3% czystości), 7-O-diglikozyd bajkaleiny (179,1 mg, 99,2% czystości). Z ekstraktu metanolowego z liści O. indicum wyodrębniono chryzyn-7-O-glukuronid, chryzyno-diglikozyd i bajkaleinę. Struktura chryzyno-diglikozydu nie została jeszcze poznana. Ekstrakcja chloroformem odtłuszczonych liści daje gumowate ciało stałe dające antrachinon i aloeemodynę. Kora łodygi zawiera flawony oroksylinę A (5,7-dihydroksy-6-metoksyflawon), chryzynę, bajkaleinę i jej 6 i 7-glukuronid, scutellarin-7-rutynozyd, śladowe ilości alkaloidu, kwas garbnikowy, sitosterol i galaktoza, bajkaleina, biochanina-A, kwas elagowy. Ekstrakt z octanu etylu z korzenia O. indicum zawiera dwa flawonoidy: i) 2,5-dihydroksy-6,7-dimetoksyflawon oraz ii) 3,7,3',5'-tetrametoksy-2-hydroksyflawon . Flawonoid I ma wartość Rf 0,621 w układzie rozpuszczalników (eter naftowy: octan etylu, 3:1). Ten flawonoid oddzielono w postaci drobnych kryształów za pomocą M.P. 195-198°. Flawonoid II ma wartość Rf 0,721 w układzie rozpuszczalników (eter naftowy:octan etylu, 3:1) i ten flawonoid oddzielono w postaci kryształów w kształcie igieł o T.P. 210-211°. Kora korzeni zawiera chryzynę, scutellarin-7-rutynozyd, słabe kwasy, śladowe ilości alkaloidów, sitosterol, galaktozę, bajkaleinę, biochaninę-A, kwas elagowy, oroksylinę-A oraz żółtą substancję barwiącą krystaliczną 5,7- dihydroksy-6-metoksyflawon. Twardziel zawiera prunetynę, sitosterol. Ekstrakt metanolowy ze strąków owoców zawiera oroksylinę A, chryzynę, bajkaleinę, kwas triterpenowy karboksylowy i kwas ursolowy. Nasiona zawierają oleje i flawonoidy takie jak chryzyna, oroksylina A, bajkaleina, bajkaleina-7-O-diglikozyd (Oroxylin B), bajkaleina-7-O-glukozyd, apigenina, terpeny, alkaloidy, saponiny, tetuina, 6-glukozyd bajkaleiny, kwas benzoesowy i kwasy tłuszczowe. Wyizolowano także nowy glukuronid-oroksydynę flawonową i chryzyn-7-O-diglikozyd. Olej z nasion zawiera kwasy kaprylowy, laurynowy, mirystynowy, palmitynowy, palmotoleinowy, stearynowy, oleinowy i linolowy. Nasiona zawierają również dwadzieścia procent błyszczącego oleju. Frakcja eterowa O. indicum dała scutellarein. Wodny likier macierzysty dawał scutellareinę i bajkaleinę. Stwierdzono, że głównym flawonoidem obecnym w ekstrakcie eteru naftowego jest bajkaleina.

TLC alkoholowego ekstraktu O. indicum przeprowadzono na płytce z żelem krzemionkowym G stosując układ rozpuszczalników, n-butanol:kwas octowy:woda, 4:1:5. Płytka TLC wykazała w UV (366 nm) strefę fluorescencyjną przy Rf 0,10 (niebieski). Po wystawieniu na działanie pary jodu pojawiło się 6 plamek o wartościach Rf 0,10, 0,30, 0,58, 0,70, 0,85, 0,95 i wszystkie były koloru żółtego. Po spryskaniu 5% metanolowym kwasem siarkowym i ogrzewaniu płytki przez 10 min w temperaturze 105°, pojawiło się 5 plamek o wartościach Rf 0,25, 0,58, 0,70, 0,85, 0,95 i wszystkie w kolorze szarym. Wydajność wodnego i etanolowego ekstraktu z kory łodyg O. indicum wynosiła odpowiednio 7,03% w/w i 6,14% w/w. Wydajność eteru naftowego, chloroformu, octanu etylu i ekstraktu n-butanolowego z kory korzeni O. indicum wynosiła odpowiednio 0,32, 0,78, 1,52 i 1,68%. Stwierdzono, że wydajność ekstraktu metanolowego z liści O. indicum wyniosła 11,1% w/w.

FARMAKOLOGIA

W surowych ekstraktach roślinnych flawonoidy są często obecne w postaci glikozydów O- lub C-. Flawonoidy mają różne działania biologiczne, takie jak indukcja apoptozy, zatrzymanie cyklu komórkowego, antyproliferacja, antyangiogeneza i antyoksydacja lub połączenie tych czynności. Flawonoidy znane są ze swojego działania przeciwzapalnego i przeciwalergicznego. Chryzyna to flawon, który wykazuje wiele aktywności biologicznych, tj. przeciwbakteryjne, przeciwutleniające, przeciwzapalne, przeciwalergiczne, przeciwnowotworowe, przeciwestrogenowe i przeciwlękowe. Chryzyna ma również działanie hamujące tyrozynę i umiarkowaną aktywność hamującą aromatazę. Może również hamować metabolizm kancerogennego benzo[α]pirenu przez komórki zarodka chomika w hodowli tkankowej. Chryzyna ma działanie przeciwbakteryjne iw celu jej zwiększenia przygotowano również pochodną chryzyny, w której układ pierścieniowy chryzyny jest połączony z alkiloaminami przez różne odstępniki w pozycji C-7 w celu zwiększenia ich lipofilności. Przygotowano serię pochodnych chryzyny zawierających 3, 4 i 6-węglowe łączniki pomiędzy pierścieniem heterocyklicznym a chryzyną i oceniono ich aktywność przeciwbakteryjną. Wśród nich dobrą aktywność przeciwbakteryjną wykazywały związki zawierające 4-węglowy łącznik pomiędzy chryzyną a pierścieniem heterocyklicznym. Oroksylina-A, naturalnie występujący monoflawonoid, wykazuje wiele aktywności biologicznych, takich jak hamowanie COX-2, cytotoksyczne i przeciwbakteryjne. Wykazał również działanie anty-HIV i hamujące peroksydację lipidów. Oroxylin-A ma działanie przeciwbakteryjne, wprowadzenie grupy acylowej w pozycji C-7 oroksyliny-A w znacznym stopniu zwiększyło potencjał hamujący. Nie opublikowano jeszcze szczegółowego badania toksyczności O. indicum, ale dostępne informacje wskazują, że maksymalna tolerowana dawka wynosi około 100 mg/kg.

POTENCJALNE KORZYŚCI - BADANIA NAUKOWE

1. AKTYWNOŚĆ PRZECIWZAPALNA

Aktywność przeciwzapalną oceniano na modelu obrzęku łap szczura wywołanego karageniną, stosując diklofenak sodowy jako standardowy lek. Zastosowano dwie dawki 150 mg/kg i 300 mg/kg wodnego ekstraktu O. indicum. Wynik pokazał, że objętość łapy była znacznie zmniejszona w sposób zależny od dawki w porównaniu z kontrolą. Ekstrakt w dawce 300 mg/kg wykazywał maksymalne działanie przeciwzapalne. Jednak aktywność wytworzona przez obie dawki była mniejsza niż standard odniesienia. Ekstrakt w obu dawkach wykazał znaczące (P<0,05) działanie przeciwzapalne po 5 h, co sugeruje, że ekstrakt głównie hamuje uwalnianie substancji podobnych do prostaglandyn.

2. AKTYWNOŚĆ PRZECIWWRZODOWA

50% alkoholowy ekstrakt z kory korzenia O. indicum i jego frakcje eteru naftowego, chloroformu, octanu etylu i n-butanolu badano pod kątem uszkodzeń błony śluzowej żołądka wywołanych etanolem. Ekstrakt alkoholowy (300 mg/kg, PO) i jego różne frakcje (100 i 300 mg/kg, PO) wykazały zmniejszenie owrzodzeń żołądka. Frakcje eteru naftowego i n-butanolu wykazywały maksymalne hamowanie uszkodzeń żołądka w stosunku do uszkodzeń błony śluzowej żołądka wywołanych etanolem. Wyniki były porównywalne z omeprazolem (wzorzec odniesienia). W modelu wrzodu żołądka wywołanego etanolem, leczenie zarówno aktywnymi frakcjami, jak i omeprazolem wykazało znaczną aktywność przeciwutleniającą, co jest widoczne w zmniejszeniu zakresu peroksydacji lipidów. Badano wpływ aktywnej frakcji kory korzeniowej na wskaźnik owrzodzenia, całkowitą kwasowość, całkowitą produkcję kwasu, aktywność pepsyny, produkcję pepsyny i całkowity stosunek węglowodanów do białka u szczurów z podwiązaniem odźwiernika. Aktywna frakcja kory korzeni w dawce 100 mg/kg p.o. wykazali znaczące zmniejszenie (P<0,05) wskaźnika wrzodów, całkowitej kwasowości, całkowitej produkcji kwasu, aktywności pepsyny i produkcji pepsyny wraz ze znaczącym wzrostem całkowitego stosunku węglowodanów do białka. Mechanizm działania przeciwwrzodowego można przypisać zmniejszeniu aktywności wydzielania kwasu żołądkowego i aktywności przeciwutleniającej prowadzącej do cytoprotekcji żołądka. Ta aktywność może być powiązana z obecnością bajkalii w korze korzeni rośliny.

3. AKTYWNOŚĆ PRZECIWBAKTERYJNA

Aktywność przeciwdrobnoustrojowa surowego ekstraktu O. indicum (eter naftowy, octan etylu i metanol), związek 1 (2,5-dihydroksy-6,7-dimetoksyflawon) i związek 2 (3,7,3',5'- tetrametoksy-2-hydroksyflawon) testowano na czternastu patogennych bakteriach (5 Gram-dodatnich i 9 Gram-ujemnych) i siedmiu patogennych grzybach. Jako podłoża bakteriologiczne zastosowano agar odżywczy i bulion odżywczy, a do wzrostu grzybów zastosowano agar ziemniaczano-dekstrozowy (PDA). W badaniu przesiewowym przeciwbakteryjnym każdą próbkę rozpuszczono w metanolu w stężeniu 200 μg/10 μl. Aktywność tych próbek porównano ze standardowym krążkiem z kanamycyną (K-30 μg/krążek) przy użyciu standardowej metody dyfuzji krążkowej. Podobnie przeprowadzono skrining przeciwgrzybiczy przy stężeniu 300 μg/krążek dla każdej próbki i aktywność porównano ze standardowym krążkiem klotrimazolu (K-30 μg/krążek). Z wyników doświadczalnych przeciwbakteryjnych i przeciwgrzybiczych jasno wynikało, że surowe ekstrakty (eter naftowy, octan etylu) oraz związek 1 i 2 wykazały znaczną aktywność przeciwbakteryjną i przeciwgrzybiczą, ale były słabsze niż standardowe kanamycyna i klotrimazol, gdzie jako ekstrakt metanolowy wykazywał niewielką aktywność. Odkrycia potwierdzają zastosowanie O. indicum w medycynie tradycyjnej do leczenia infekcji bakteryjnych i grzybiczych.

4. AKTYWNOŚĆ ANTYOKSYDACYJNA

Aktywność przeciwutleniającą etanolu i wodnego ekstraktu z liści O. indicum badano w dwóch modelach in vitro, mianowicie. aktywność wymiatania rodników poprzez redukcję 1,1-difenylo-2-pikrylohydrazylu (DPPH) oraz aktywność wymiatania rodników tlenku azotu w układzie odczynników Griessa. Ekstrakt etanolowy wykazywał znaczną aktywność przeciwutleniającą w obu modelach. W zmiataniu rodników DPPH aktywność ekstraktów wynosiła IC50=24,22 μg/ml, natomiast w zmiataniu rodników tlenku azotu (NO) aktywność wynosiła IC50=129,81 μg/ml. Wynik pokazał, że ekstrakt etanolowy z liści O. indicum ma działanie wymiatające wolne rodniki.

5. AKTYWNOŚĆ PRZECIWNOWOTWOROWA

Ekstrakt metanolowy z owoców O. indicum hamował proliferację komórek HL-60 in vitro. Jako aktywny składnik ekstraktu znaleziono flawonoidową bajkaleinę. Dalej badano wpływ bajkaleiny in vitro na żywotność i indukcję apoptozy w linii komórkowej HL-60. Żywotność komórek po traktowaniu bajkaleiną przez 24 godziny określono ilościowo przez zliczenie żywych komórek przy użyciu barwienia błękitem tryptanowym. Wynik pokazał, że bajkaleina powodowała 50% zahamowanie komórek HL-60 w stężeniu 25-30 μM. Hamowanie proliferacji komórek HL-60 w wyniku 36-48 godzinnej ekspozycji na 10 lub 20 μM bajkaleiny było związane z akumulacją komórek w fazach S lub G2M. Wyniki wskazują, że bajkaleina ma działanie przeciwnowotworowe na ludzkie komórki rakowe

6. AKTYWNOŚĆ ANTYMUTAGENNA

Ekstrakt metanolowy O. indicum silnie hamował mutagenność Trp-P-1 w metodzie preinkubacji Amesa w obecności mieszanki S9 z użyciem Salmonella typhimurium. Tylko 5 μl surowego ekstraktu hamowało 91±5% mutagenezy indukowanej przez 50 ng Trp-P-1. Główny składnik antymutagenny zidentyfikowano jako bajkaleinę o wartości IC50 2,78±0,15 μM. Silna antymutagenność ekstraktu była skorelowana z wysoką zawartością (3,95±0,43% suchej masy) bajkaleiny. Bajkaleina działa jako desmutagen, ponieważ hamuje N-hydroksylację Trp-P-2. Działanie antymutagenne bajkaleiny stwierdzono głównie ze względu na hamowanie N-hydroksylacji katalizowanej przez monooksygenazy P450 w S-9.

7. AKTYWNOŚĆ FOTOCYOTOKSYCZNA

Aktywność fotocytotoksyczną ekstraktu metanolowego z liści O. indicum badano wobec linii komórkowej białaczki promielocytowej HL60. HL60 inkubowano z 21 μg/ml surowych ekstraktów przez 2 godziny i napromieniowano 9,6 J/cm2 źródła światła o szerokim spektrum w czterech powtórzeniach. Przeżywalność komórek oceniano 24 godziny później zgodnie z protokołem kolorymetrycznym MTT. Jako kontrolę pozytywną zastosowano Pheophorbide-a, dostępny w handlu i dobrze scharakteryzowany fotouczulacz. Aby określić próbki, które wykazują ogólną cytotoksyczność, przeprowadzono również równoległy test bez napromieniania. Wyniki wykazały, że ekstrakt metanolowy z liści O. indicum wykazuje aktywność fotocytotoksyczną w stężeniu 21 μg/ml.

8. AKTYWNOŚĆ PRZECIWARTRETYCZNA

Wodny i etanolowy ekstrakt z O. indicum badano pod kątem uwalniania in vitro mieloperoksydazy (MPO) z leukocytów otrzewnej szczura. Wyniki wskazują, że ekstrakt wodny miał znaczący wpływ, tj. 64% hamowanie uwalniania MPO.

9. AKTYWNOŚĆ IMMUNOSTYMULUJĄCA

Ekstrakt n-butanolowy z kory korzenia O. indicum (100 mg/kg, raz dziennie przez 22 dni) badano pod kątem aktywności immunomodulacyjnej u szczurów, stosując pomiary odpowiedzi immunologicznej na czerwone krwinki owiec (miano przeciwciał hemaglutynujących [HA] SRBC) i reakcje nadwrażliwości typu opóźnionego (DTH). W odpowiedzi na SRBC, leczenie frakcją n-butanolu spowodowało znaczny wzrost miana krążącego HA podczas wtórnych odpowiedzi przeciwciał, wskazując na wzmocnienie pewnych aspektów odpowiedzi humoralnej. Leczenie spowodowało również znaczny wzrost powstawania obrzęku łapy, co wskazuje na zwiększoną odpowiedź gospodarza na DTH. Analiza histopatologiczna tkanek limfoidalnych w grupie leczonej wykazała wzrost komórkowości, np. limfocytów T i sinusoidów. W przeciwieństwie do tego, leczenie deksametazonem spowodowało znaczne zmniejszenie miana HA, odpowiedzi DTH i aktywności przeciwutleniającej. W modelu obrzęku immunologicznego z potrójnym antygenem, zakres obrzęku wywołanego u szczurów leczonych lekiem był większy niż u szczurów kontrolnych, potwierdzając w ten sposób nasilone reakcje DTH w odpowiedzi na leczenie lekiem. Aktywność O. indicum można przypisać jego zdolności do wzmacniania specyficznej odpowiedzi immunologicznej (zarówno humoralnej, jak i komórkowej).

10. DZIAŁANIE ANTYPROLIFERACYJNE

Aktywność antyproliferacyjną O. indicum badano na liniach komórek ludzkiego nowotworu sutka. Wyniki wskazują, że O. indicum wykazuje działanie antyproliferacyjne przeciwko liniom komórkowym raka piersi MCF7 i MDA-MB-231.

11. AKTYWNOŚĆ HEPATOPROTEKCYJNA

Aktywność hepatoprotekcyjną O. indicum badano przeciwko hepatotoksyczności indukowanej czterochlorkiem węgla (CCl4) u myszy i szczurów. Badania biochemiczne wykazały, że ekstrakty alkoholowe (300 mg/kg), eter naftowy (300 mg/kg) i n-butanol (100 i 300 mg/kg) istotnie (P<0,05) obniżały podwyższony poziom transaminazy szczawiooctowo-glutaminowej w surowicy (SGOT). stężenie transaminazy glutaminowo-pirogronianowej (SGPT), fosfatazy alkalicznej (ALP) i bilirubiny całkowitej (TB) w porównaniu z grupą kontrolną. Zwiększone tworzenie nadtlenku lipidów (LPO), zmniejszenie glutationu (GSH) i zmniejszenie aktywności enzymów antyoksydacyjnych dysmutazy ponadtlenkowej (SOD), katalazy (CAT) w tkankach zwierząt traktowanych CCl4 zostały znacząco znormalizowane przez leczenie O. indicum. Badanie histopatologiczne ujawniło również, że wstępne traktowanie O. indicum przywróciło wywołane przez CCl4 zmiany stanu antyoksydacyjnego tkanek. Sugeruje się, że kora korzenia wykazywała znaczną aktywność przeciwutleniającą, która z kolei może być odpowiedzialna za jej aktywność hepatoprotekcyjną.

Powyższe badania mają charakter typowo informacyjny oraz były wykonawane z udziałem róznych ekstraktów, innych niż dostępny w ofercie sklepu. Dlatego też nie można ich traktować jako wiarygodne źródło informacji na temat produktu dostępnego w naszej sprzedaży oraz sugestię co do jego spożywania. Informacje zawarte w opisach nie są zatwierdzone przez GIF, GIS oraz EFSA i nie mają na celu leczenia, diagnozowania lub zapobiegania jakiejkolwiek chorobie.

PRODUKT DO ZASTOSOWAŃ ZEWNĘTRZNYCH.

LITERATURA CYTOWANA

1. Nakahara K, Roy MK, Alzoreky NS, Thalang V, Trakoontivakorn G. Inventory of indigenous plants and minor crops in Thailand based on bioactivities. 9th JIRCAS International Symposium- Value addition to Agricultural Product. 2002:135–9.

2. Chauhan NS. Medicinal and Aromatic plants of Himachal Pradesh. 1st ed. New Delhi: Indus Publishing; 1999. Oroxylum indicum; pp. 96–298. 

3. Warrier PK, Nambiar VP, Ramankutty C, Vasudevan R, editors. Indian Medicinal Plants: A compendium of 500 species. 1st ed. Chennai: Orient Longmam Private Ltd; 1995. Oroxylum indicum; pp. 186–90.

4. Khare CP. Oroxylum indicum. In: Khare CP, editor. Indian Herbal Remedies: Rational Western Therapy, Ayurvedic and other traditional usage, Botany. 4th ed. New York: Springer-Verlag Berlin Heidelberg; 2004. pp. 340–1. 

5. Jayaram K, Prasad MN. Genetic diversity in Oroxylum indicum (L.) Vent. (Bignoniaceae), a vulnerable medicinal plant by random amplified polymorphic DNA marker. Afr J Biotech. 2008;7:254–62. 

6. Qiang G, Luo H, Zheng W, Liu Z, Huang Y. Pseudonocardia oroxyli sp. nov., a novel actinomycete isolated from surface-sterilized Oroxylum indicum root. Int J Syst Evol Microbiol. 2006;56:2193–7. 

7. Dalal NV, Rai VR. In vitro propagation of Oroxylum indicum Vent. a medicinally important forest tree. J For Res. 2004;9:61–5. 

8. Nakahara K, Trakoontivakorn G, Alzoreky NS, Ono H, Onishi-Kameyama M, Yoshida M. Anti-mutagenicity activity of some edible Thai plants, and a bioactive carbazole alkaloid, mahanine, isolated from Micromelum minutun. J Agri Food Chem. 2002;50:4796–802. 

9. Yoganarasimhan SN. Vol. 1. Bangalore: Interline Publishing; 1996. Medicinal plants of India: Karnataka; pp. 366–7. 

10. Bhattacharje SK. Use of flavours and fragrances. In: Bhattacharje SK, editor. Handbook of aromatic plants. 2nd ed. Jaipur: Pointer Publishers; 2005. 

11. Zaveri M, Khandhar A, Jain S. Quantification of Baicalein, Chrysin, Biochanin-A and Ellagic acid in root bark of Oroxylum indicum by RP-HPLC with UV detection. Eurasian J Anal Chem. 2008;3:245–57.

12. Jabbar S, Khan MT, Choudhuri MS, Sil BK. Bioactivity studies of the individual ingredients of the Dashamularishta. Pak J Pharm Sci. 2004;17:9–17. 

13. Chen LJ, Games DE, Jones J. Isolation and identification of four flavonoids constituents from the seeds of Oroxylum indicum by high-speed counter-current chromatography. J Chromatogr A. 2003;988:95–105. 

14. Chen LJ, Song H, Lan XQ, Games DE, Sutherland IA. Comparisons of high speed counter-current chromatography instruments for the separation of the extracts of the seeds of Oroxylum indicum. J Chromatogr A. 2005;1063:241–5. 

15. Dey AK, Mukherjee A, Das PC, Chatterjee A. Occurrence of aloe-emodin in the leaves of Oroxylum indicum Vent. Indian J Chem. 1978;16B:1042.

16. Yuan Y, Hou W, Tang M, Luo H, Chen LJ, Guan YH, et al. Separation of flavonoids from the leaves of Oroxylum indicum by HSCCC. Chromatographia. 2008;68:885–92. 

17. Yuan Y, Houding L, Lijuan C. Linear scale-up of the separation of active components from Oroxylum indicum using high speed counter current chromatography. Chinese J Chromatogr. 2008;26:489–93. 

18. Subramaniam SS, Nair AG. Flavonoids of the stem bark of Oroxylum indicum. Curr Sci. 1972;41:62–3. 

19. Kawsar U, Sayeed A, Islam A, Rahman AA, Ali A, Khan AM, et al. Biological activities of extracts and two flavanoids from Oroxylum indicum Vent. J Biol Sci. 2003;3:371–5. 

20. Roy MK, Nakahara K, Trakoontivakorn G, Takenaka M, Isobe S, Tsushida T. Baicalein, a flavanoid extracts from a methanolic extract of Oroxylum indicum inhibits proliferation of a cancer cell line in vitro via induction of apoptosis. Pharmazie. 2007;62:149–53. 

21. Tomimori T, Imoto Y, Ishida M, Kizu H, Namba T. Studies on the Nepalese crude drug.VIII. On the flavonoid constituents of the seed of Oroxylum indicum. Shoyakugaku Zasshi. 1988;42:98–101. 

22. Bhattacharje AK, Das AK. Phytochemical screening of some Indian plants. QJ Crude Drug Res. 1969;9:1408. 

23. Kapoor LD. 1st ed. Florida: CRC press Inc; 2001. Handbook of Ayurvedic Medicinal Plants: Herbal reference library; p. 252. 

24. Subramaniam SS, Nair AG. Flavonoids of leaves of Oroxylum indicum and Pajanelia longifolia. Phytochem. 1972;11:439–70. 

25. Laupattarakasem P, Houghton PJ, Hoult JR, Itharat A. An evaluation of the activity related to inflammation of four plants used in Thailand to treat arthritis. J Ethnopharmacol. 2003;85:207–15. 

26. Kandaswami C, Lee LT, Lee PP, Hwang JJ, Ke FC, Huang YT, et al. The antitumor activities of flavonoids. In vivo. 2005;19:895–909. 

27. Ren W, Qiao Z, Wang H, Zhu L, Zhang L. Flavonoids: promising anticancer agents. Med Res Rev. 2003;23:519–34. 

28. Kao YC, Zhou C, Sherman M, Laughton CA, Chen S. Molecular basis of the inhibition of human aromatase (estrogen synthetase) by flavone and isoflavone phytoestrogens: A Site-directed Mutagenesis Study. Environ Health Perspect. 1998;106:85–92. 

29. Qais N, Rahman MM, Rashid MA, Koshino H, Nagasawa K, Nakata T. Antibacterial flavonoids from Desmos chinensis. Fitoterapia. 1996;67:554–5. 

30. Hecker M, Preiss C, Klemm P, Busse R. Inhibition by antioxidants of nitric oxide synthase expression in murine. Br J Pharmacol. 1996;118:2178. 

31. Fishkin RJ, Winslow JT. Endotoxin-induced reduction of social investigation by mice: interaction with amphetamine and antiinflammatory drugs. Psychopharmacology (Berl) 1997;132:335–41. 

32. Pearce FL, Befs AD, Bienenstock J. Mucosal mast cells. III. Effect of quercitin and other flavonoids on antigen-induced histamine secretion from rat intestinal mast cells. J Allergy Clin Immunol. 1984;73:819–23. 

33. Habtemariam S. Flavonoids as inhibitors or enhancers of the cytotoxicity of tumor necrosis factor-alpha in L-929 tumor cells. J Nat Prod. 1997;60:775–8. 

34. Wolfman C, Viola H, Paladini A, Dajas F, Medina JH. Possible anxiolytic effects of chrysin, a central benzodiazepine receptor ligand isolated from Passifloara coerulea. Pharmacol Biochem Behav. 1994;47:1–4. 

35. Kubo I, Kinst-Hori I, Choudhuri SK, Kubo Y, Sanchez Y, Ogura T. Flovonols from Heterothesca inuloides: tyrosinase inhibitory activity and structural criteria. Bioorg Med Chem Lett. 2000;8:1749–55. 

36. Suresh CT, Leena S, Sari M, Risto S. Inhibition of 17β-estradiol formation by isoflavonoids and flavonoids in cultured JEG-3 cells: Search for aromatase-targeting dietary compounds. J Med Food. 1999;2:235–8. 

37. Liu Y, Ho DK, Cassady JM, Cook VM, Baird WM. Isolation of potential anticancer chemopreventive agents from Eriodictyon californicum. J Nat Prod. 1992;55:357–63. 

38. Babu KS, Babu TH, Srinivas PV, Kishore KH, Murthy US, Rao JM. Synthesis and biological evaluation of novel C (7) modified chrysin analogues as antibacterial agents. Bioorg Med Chem Lett. 2006;16:221–4. 

39. Chen YC, Yang LL, Lee TJ. Oroxylin A inhibition of lipopolysaccharide-induced iNOS and cox-2 gene expression via suppression of nuclear factor-kb activation. Biochem Pharmacol. 2000;59:1445–57. 

40. You KM, Jong HG, Kim HP. Inhibition of cyclooxygenase/lipooxygenase from human platelets by polyhydroxylated/methoxylated flavonoids isolated from medicinal plants. Arch Pharmacol Res. 1999;22:18–24. 

41. Ryu SH, Ahn BZ, Pack MY. The cytotoxic principle of Scutellariae radix against L1210 cell. Planta Med. 1995;4:335. 

42. Ali RM, Houghton PJ, Hoult JRS. Antimicrobial and antiinflammatory activities of extracts and constituents of Oroxylum indicum (L.) Vent Phytomed. 1998;5:375–81.

43. Rasadah MA, Houghton PJ. Anti-microbial activity of some species of Bignoniaceae. ASEAN Review of Biodiversity and Environmental Conservation (ARBEC) 1998;3:1–3.

44. Kimura Y, Okuda Y, Taira Z, Shoji N, Takemoto T, Arichi S. Studies on Scutellariae radix. IX. New component inhibiting lipid peroxidation in rat liver. Planta Med. 1984;50:290–5.

45. Nakahara K, Onishi-Kameyama M, Ona H, Yoshida M, Trakoontivakorn G. Antimutagenic activity against Trp-P-1 of the edible Thai plant, Oroxylum indicum Vent. Biosci Biotechnol Biochem. 2001;65:2358–60. 

46. Babu KS, Babu TH, Srinivas PV, Sastry BS, Kishore KH, Murty US, et al. Synthesis and in vitro study of novel 7-O-acyl derivatives of Oroxylin A as antibacterial agents. Bioorg Med Chem Lett. 2005;15:3953–6. 

47. Upaganlawar AB, Tende CR, Yeole PG. Antiinflammatory activity of aqueous extract of Oroxylum indicum Vent.leaves extract-preliminary study. Pharmacology online. 2009;1:22–6.

48. Khandhar M, Shah M, Santani D, Jain S. Antiulcer activity of the root bark of Oroxylum indicum against experimental gastric ulcers. Pharm Bio. 2006;44:363–70. 

49. Chopade VV, Upaganlawar AB, Yeole PG. Antimicrobial activity of Oroxylum indicum. Antiseptic. 2008;105:146–7. 

50. Upaganlawar AB, Tende CR. In vitro antioxidant activity of leaves of Oroxylum indicum Vent. Biomed. 2007;2:300. 

51. Ong CY, Ling SK, Ali RM, Chee CF, Samah ZA, Ho AS, et al. Systemic analysis of in vitro photo-cytotoxic activity in extracts from terrestrial plants in Peninsula Malaysia for photodynamic therapy. J Photochem Photobiol B. 2009;96:216–22. 

52. Zaveri M, Gohil P, Jain S. Immunostimulant activity of n-butanol fraction of root bark of Oroxylum indicum Vent. J Immunotoxicol. 2006;3:83–99. 

53. Lambertini E, Piva R, Khan MT, Lampronti I, Bianchi N, Borgatti M, et al. Effects of extracts from Bangladeshi medicinal plants on in vitro proliferation of human breast cancer cell lines and expression of estrogen receptor alpha gene. Int J Oncol. 2004;24:419–23. 

54. Zaveri M, Jain S. Hepatoprotective effect of root bark of Oroxylum indicum on carbon tetrachloride (CCl4)-induced hepatotoxicity in experimental animals. [Last updated on 2009 Aug 08].

DISCLAIMER

Ten produkt nie jest suplementem diety na terenie Polski. Informacje zawarte w opisach nie są zatwierdzone przez GIF, GIS oraz EFSA i nie mają na celu leczenia, diagnozowania lub zapobiegania jakiejkolwiek chorobie.

Cytowane badania naukowe nie mogą być uważane za jednoznaczne z uwagi na ich ograniczony charakter i nie muszą ujawniać pełnego spektrum działania substancji.

Opinie klientów zawarte w kartach produktów nie są opiniami ekstrakty.com oraz nie mogą być uznawane za zalecenia do ich stosowania. Ekstrakty.com nie bierze odpowiedzialności za informacje w nich zawarte.

Zawsze skonsultuj się z lekarzem lub farmaceutą podczas stosowania nowego środka nootropowego. Obsługujemy tylko osoby pełnoletnie i nie bierzemy odpowiedzialności za niewłaściwe stosowanie zakupionych produktów.

Dokładamy wszelkich starań by opis właściwości, działanie, dawkowanie, zastosowanie produktów oraz cena były wykonane możliwie rzetelnie i precyzyjnie. Nasz sklep to nie apteka, dzięki czemu masz prawo do zwrotu nieotwartego produktu bez podania przyczyny w ciągu 30 dni.

Na górę
Menu
Zamknij
Koszyk
Zamknij
Wstecz
Konto
Zamknij